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Vectors: Mammalian Expression Change

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CheckMate Mammalian Two-Hybrid System Open/Close Add
目的に合った哺乳細胞株で相互作用実験
グリコシレーション、リン酸化、アシル化などの翻訳語修飾の研究に

Two-hybrid systemはタンパク質どうしの相互作用をin vivoで検出する非常に強力な方法です。Two-hybrid systemsは、ある特定のDNA配列に結合するDNA結合ドメインと基本転写因子に結合する転写活性化ドメインという、転写因子に存在する分子ドメインからなります。DNA結合ドメインと結合した転写活性化ドメインはTATA boxでRNA polymerase I複合体の会合を促進し、転写を促進させます。CheckMate™ Mammalian Two-Hybrid Systemにおいて、DNA結合ドメインと転写活性化ドメインは各々のプラスミドから生産されますが、DNA結合ドメインを融合したあるタンパク質X が転写活性化ドメインを融合したタンパク質Yと相互作用すると、これらのドメインが近接し、レポーター遺伝子の転写が行われます。

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CheckMate/Flexi Vector Mammalian Two-Hybrid System Open/Close Add
期待されるタンパク質間相互作用の確認や相互作用ドメインの同定
セルベースアッセイ用の安定発現株の作製
哺乳動物のタンパク質発現、翻訳語修飾の研究をin situで

CheckMate™/Flexi® Vector Mammalian Two-Hybrid Systemは、2つのタンパク質あるいはドメイン同士の相互作用を確認あるいは評価するためのシステムで、細胞ベースのアッセイを行うためのステイブルな細胞株構築にも使用できます。まず目的の哺乳動物タンパク質をコードする遺伝子をクローニングし、細胞に導入するとネイティブな細胞内環境でタンパク質の発現および翻訳後修飾が起こります。酵母のツーハイブリットシステム同様に目的タンパク質の1つ ("X")をDNA結合ドメインと融合させ、もう片方のタンパク質 ("Y") を転写活性ドメインと融合させるように設計します。pFN10A (ACT) Flexi® Vectorにはヘルペスシンプレックスウイルス VP16 転写活性領域が、FN11A (BIND) Flexi® Vectorには酵母のGAL4 DNA結合領域がそれぞれのクローニングサイト上流に配置されています。また、pFN11A (BIND) Flexi® VectorにはSV40プロモーターの制御下で発現されるウミシイタケルシフェラーゼ遺伝子が組み込まれており、トランスフェクション効率の補正に利用することができます。第3のベクターpGL4.31[luc2P/Gal4UAS/Hygro] Vectorのminimal TATA box上流にはGAL4結合配列が5回繰り返されており、タンパク質XとYが相互作用すると、下流に位置するホタルルシフェラーゼ遺伝子が転写され、レポーターとして機能します。
オリジナルのCheckMate™ Mammalian Two-Hybrid Systemから進化した新しいフレキシブルクローニングシステムに追加された機能として大きく2つの点が挙げられます。クローニングの容易なフレキシブルクローニングシステムを採用しており、他の機能を有するFlexi® Vectorへのダイレクショナルクローニングが迅速、簡単に行える。 レポーターベクターのルシフェラーゼ遺伝子がS/N比の高い改良型luc2になり、分解配列も付加されているため、応答に優れた実験が可能となり、さらにハイグロマイシン耐性遺伝子も付加されて、安定株の作成を容易にします。

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pAdVAntage Vector Open/Close Add
タンパク質発現ベクターとともにトランジェントにトランスフェクションすることにより翻訳開始が亢進
様々な細胞株で使用可能

pAdVAntage™ Vectorには、Adenovirus Virus-associated I (VAI) RNA遺伝子が挿入されています。この遺伝子により翻訳効率が促進するため、タンパク質の発現量が増加することが示されています。他の発現ベクターと一緒に重トランスフェクションすれば、様々な細胞株で一過性のタンパク質発現量の増加が期待できます。
発現ベクターのトランスフェクションによる目的タンパク質の発現は必ずしも最適な状態で行なわれているとはいえません。トランスフェクションに伴い生成される2本鎖RNA(dsRNA)は、宿主細胞の抗ウイルス防御システム酵素の1つであるdsRNA-activated inhibitor(DAI)を活性化すると考えられています。活性化型DAIは翻訳開始因子elF-2をリン酸化し、翻訳(タンパク質の生産)を休停止させます(1, 2)。
このDAIによる翻訳の阻害は、アデノウイルスVAI RNA (Virus Associated I RNA) により克服することができます。このRNAはpAdVAntage™ Vectorの重トランスフェクション後、RNA polymerase IIIにより合成されます。VAI RNAはDAIに結合し、その活性化を防ぐことにより、翻訳/タンパク質発現を回復させます(2, 3, 4)。

参考資料
1.Farrell, P.J. et al. (1977) Cell 11, 187.
2.Groskreutz, D. and Schenborn, E. (1994) Promega Notes 48, 8.
3.Kitajewski, J. et al. (1986) Cell 45, 195.,br>4.O'Malley, R. et al. (1986) Cell 44, 391.

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pCI-neo Mammalian Expression Vector Open/Close Add
ネオマイシン耐性遺伝子により安定発現細胞を選択可能
後期 SV40 poly(A) シグナルにより初期 SV40 poly(A) シグナル の5倍の恒常レベルのタンパク質発現
T7 RNA プロモーターによる in vitro 転写および f1 複製起点からの ssDNA 作成

pCI-neo Mammalian Expression Vectorは、哺乳動物細胞における安定した遺伝子発現に最適な発現ベクターです。抗生物質G418を用いてトランスフェクト細胞を選択すれば、一過性の発現または安定な発現に利用できます。

参考資料
1.Schmidt, E.V. et al. (1990) Mol. Cell. Biol. 10, 4406.
2.Brinster, R.L. et al. (1988) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 85, 836.
3.Choi, T. et al. (1991) Mol. Cell. Biol. 11. 3070.
4.Palmiter, R.D. et al. (1991) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 88, 478.
5.Carswell, S. and Alwine, J.C. (1989) Mol. Cell. Biol. 9, 4248.

GenBank®/EMBL Accession Number
U47120

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pCMVTNT and pTNT Vectors Open/Close Add
SP6- または T7 プロモーターを利用した in vitro 転写 / 翻訳システムで利用できる in vitro または in vivo 発現ベクター

pCMVTnT™とpTnT™ Vectorはクローンした遺伝子をin vitroやin vivoで便利に発現させるためにデザインされたベクターです。SP6とT7プロモーターが含まれているため、SP6あるいはT7ベースのin vitro転写/翻訳カップルシステムで発現が可能です。また、RNAファージプロモーターによってin vitroのRNA合成が高効率で行われます。どちらのベクターも5´ β-globin leader sequenceとsynthetic poly(A)30 tailを有し、これらはいくつかの遺伝子の発現を促進することが知られています。
in vivoの発現用に、pCMVTnT™ VectorはCMV enhancer/promoter領域を含み、多くの細胞種において強力な構成的発現が可能となります

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pFN21A HaloTag CMV Flexi Vector Open/Close Add
哺乳動物細胞で恒常的なタンパク質発現
CMV 最初期エンハンサー / プロモーターにより発現
安定発現または一過性発現に適応

このベクターは哺乳類細胞においてN末端にHaloTag®を融合したタンパク質を発現させるためにデザインされました。発現後、HaloTag®融合タンパク質に蛍光HaloTag®リガンドを結合させて、局在や輸送を確かめるための細胞イメージングが可能です。さらに、HaloTag®融合タンパク質は精製も可能であり、相互作用するパートナータンパク質を複合体としてプルダウンすることもできます。
HaloTag®融合ベクターには2種類あり、好みに応じて選べます。
pHTベクターシリーズは従来のクローニング用であり、シンプルなマルチクローニングサイト(MCS)を含むプラスミドです。
pFベクターシリーズはFlexi®ベクタークローニングシステム(インサートを意図した方向にクローニングするシステム)に使用できます。このシステムは2つのレアカッティング制限酵素である SgfIとPmeIを用い、様々なFlexi®ベクター間で迅速、効率的かつ正確にタンパク質のコード領域を移し替えることができ、再シーケンスも必要ありません。
注:サブクローニングにおいてインサートを含まないコロニーのバックグラウンドを低下させるため、Flexi®ベクターは致死遺伝子であるbarnaseを含みます。Flexi® Vector Cloning Systemを用いることで、インサートがbarnase遺伝子ととって代わります。このベクターはインサートを含まない状態では一般的な研究室で使用する大腸菌株で増やすことができません。

http://www.promega.com/products/pm/halotag-technology/kazusa-collection

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pFN28A and pFN28K HaloTag CMV-neo Flexi Vectors Open/Close Add
哺乳動物細胞で恒常的なタンパク質発現
CMV 最初期エンハンサー / プロモーターにより発現
ネオマイシン耐性遺伝子

このベクターは哺乳類細胞においてN末端にHaloTag®を融合したタンパク質を発現させるためにデザインされました。発現後、HaloTag®融合タンパク質に蛍光HaloTag®リガンドを結合させて、局在や輸送を確かめるための細胞イメージングが可能です。さらに、HaloTag®融合タンパク質は精製も可能であり、相互作用するパートナータンパク質を複合体としてプルダウンすることもできます。
HaloTag®融合ベクターには2種類あり、好みに応じて選べます。
pHTベクターシリーズは従来のクローニング用であり、シンプルなマルチクローニングサイト(MCS)を含むプラスミドです。
pFベクターシリーズはFlexi®ベクタークローニングシステム(インサートを意図した方向にクローニングするシステム)に使用できます。このシステムは2つのレアカッティング制限酵素である SgfIとPmeIを用い、様々なFlexi®ベクター間で迅速、効率的かつ正確にタンパク質のコード領域を移し替えることができ、再シーケンスも必要ありません。
注:サブクローニングにおいてインサートを含まないコロニーのバックグラウンドを低下させるため、Flexi®ベクターは致死遺伝子であるbarnaseを含みます。Flexi® Vector Cloning Systemを用いることで、インサートがbarnase遺伝子ととって代わります。このベクターはインサートを含まない状態では一般的な研究室で使用する大腸菌株で増やすことができません。

http://www.promega.com/products/pm/halotag-technology/kazusa-collection

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