ApoTox-Glo™ Triplex Assay

Part Numbers: G6320, G6321

G6320_ApoTox-Glo--Triplex-Assay--10ml_3
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同じサンプルウェルより細胞生存性、細胞毒性、アポトーシスを測定

  • "添加 - 混和 - 測定" だけのプロトコルなので容易に実施可能
  • ”ビルトイン” コントロールにより補正されたデータを取得可能
  • 柔軟性が高く自動化も容易

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選択製品のカタログ番号: G6320

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ApoTox-Glo™ Triplex Assay
10ml
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Three Effective Assays in One Single Product

ApoTox-Glo™ Triplex Assay は、培養細胞を含む単一のウェルから細胞生存性/毒性/アポトーシスの各イベントについて容易に評価するための3つのアッセイケミストリを組合せたシステムです。まず最初に、2種類のペプチド基質を含む細胞非溶解性の試薬を加え、2つの異なるプロテアーゼバイオマーカーを同時に測定して生存性および毒性を決定します。生細胞プロテアーゼ活性はインタクトな生存細胞に限定され、細胞透過性の蛍光ペプチド基質(GF-AFC Substrate)で測定されます。この基質がインタクトな細胞に入ると、切断されて生細胞数に比例した蛍光シグナルを生じます。この生細胞活性マーカーは細胞膜が障害され培地に漏出すると不活性化されます。同時に、細胞非透過性の蛍光ペプチド基質(bis-AAF-R110 Substrate)は細胞膜の完全性が失われて外部に漏出した死細胞プロテアーゼ活性の測定に使用されます。この結果、レシオメトリック測定(比率測定)として細胞生存性と細胞毒性の値が逆相関することになります。生細胞と死細胞の比率は、細胞数とは独立した数値となり補正されたデータとして取り扱うことができます。2つめの試薬としてカスパーゼ3/7測定のための発光性DEVD-ペプチド基質と耐熱性組換えルシフェラーゼUltra-Glo™を添加します。カスパーゼ3/7による基質の切断でルシフェリンが遊離し、これがルシフェラーゼの基質となり発光を生じます。生じた光はルミノメーターで測定され、アポトーシスの主要なマーカーであるカスパーゼ3/7活性と相関します。

  • 1ウェルより細胞生存性/毒性/アポトーシスを測定:1つのサンプルから細胞死のメカニズムを決定
  • 簡便:シンプルな“添加-混和-測定”だけのプロトコル
  • ビルトインコントロールによる補正されたデータ:生細胞数と死細胞数の比率は細胞数と独立した補正データで、ウェル間、プレート間、実験日間での比較が容易
  • 柔軟で容易に自動化:添加する各アッセイ試薬の容量はスケールを自由に変えられるため多検体処理にマッチし、96や384プレートでの自動化も容易
  • 効率化とコスト削減:1ウェルで3つのアッセイを行えるため細胞培養コストや人件費を削減可能

  • 細胞死メカニズムの決定
  • 細胞毒性リスクに備えた化合物ライブラリーのプロファイリング

Cat.# G6320 contains sufficient reagents for 100 assays in a 96-well plate format or 400 assays in a 384-well format. Cat.# G6321 contains sufficient reagents for 500 assays in a 96-well plate format or 2,000 assays in a 384-well format.


  1. Niles, A.L. et al. (2007) A homogeneous assay to measure live and dead cells in the same sample by detecting different protease markers. Anal. Biochem. 366, 197–206.
  2. O'Brien, M.A. et al. (2005) Homogeneous, bioluminescent protease assays: Caspase-3 as a model. J. Biomol. Screen. 10 137–48.
  3. Niles, A.L., Moravec, R.A. and Riss, T.L. (2008) Update on in vitro cytotoxicity assays for drug development. Expert. Opin. Drug Discovery 3, 65–9.
  4. Shultz, S. et al. (2008) Utilization of an automated triplex assay: New tool to assess cell viability, cytotoxicity and apoptosis. GEN 28, 36–7.
  5. Niles, A.L., Moravec, R.A. and Riss, T.L. (2009) In vitro viability and cytotoxicity testing and same-well multi-parametric combinations for high throughput screening. Curr. Chem. Gen. 3, 33–41.

Measure Viability, Cytotoxicity, and Apoptosis in the Same Sample Well

8141MA-W

Ionomycin treatment of Jurkat cells for 6 hours results in dose-dependent decrease in viability and increase in cytotoxicity with no caspase-3/7 activation, consistent with primary necrosis.

8140MA-W

ApoTox-Glo™ Triplex Assay with suspension Jurkat cells treated with staurosporine. Staurosporine treatment for 6 hours results in a dose-dependent decrease in viability and increase in cytotoxicity with an increase in caspase-3/7 activity consistent with apoptosis.

8170MA-W

Camptothecin treatment of Jurkat cells for 48 hours results in dose-dependent decrease in viability, no cytotoxicity and increase in caspase-3/7 activity, consistent with cell-cycle arrest and early-phase apoptosis.

製品仕様

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選択製品の構成品内容

Item Part # Size

GF-AFC Substrate

G608A 1 × 10μl

bis-AAF-R110 Substrate

G609A 1 × 10μl

Assay Buffer

G610A 1 × 10ml

Caspase-Glo® 3/7 Buffer

G810A 1 × 10ml

Caspase-Glo® 3/7 Substrate

G811A 1 × 1 bottle

分析証明書

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使用制限

For Research Use Only. Not for Use in Diagnostic Procedures.

保存条件

BB

製品仕様

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選択製品の構成品内容

Item Part # Size

GF-AFC Substrate

G608B 1 × 50μl

bis-AAF-R110 Substrate

G609B 1 × 50μl

Assay Buffer

G610A 2 × 10ml

Caspase-Glo® 3/7 Buffer

G810A 5 × 10ml

Caspase-Glo® 3/7 Substrate

G811A 5 × 1 bottle

分析証明書

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使用制限

For Research Use Only. Not for Use in Diagnostic Procedures.

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